Проблемы антибиотикотерапии респираторного микоплазмоза птиц

Белкин В. А. к.в. н., НПП «АВИВАК»

РЕЗЮМЕ
Проведен анализ чувствительности референтных и полевых штаммов, возбудителей респираторного микоплазмоза (РМ), к наиболее часто применяемым в производстве противомикробным средствам. Учитывая значение минимальной ингибирующей концентрации, установлена устойчивость к большинству исследованных препаратов. Наиболее эффективными оказались препараты содержащие тиамутин и китасамицин. Необходимо перед использованием противомикробных средств обязательно уточнять минимальную ингибирующую концентрацию, чтобы получить ожидаемый терапевтический эффект.

ВВЕДЕНИЕ
Одним из эффективных средств контроля РМ в птицеводстве являются химиотерапевтические препараты (ХТП). Применение их в птицеводстве позволяет значительно повысить экономические показатели при выращивании птицы. Однако в последнее время в птицеводстве возникает проблема неэффективности применяемых препаратов. Успехи противомикоплазменной терапии последних 20-и лет практически достигли нулевой отметки. Это может быть проиллюстрировано минимум по 3-м характеристикам: динамикой практической значимости антимикоплазменных препаратов, количеством новых ХТП и эффективностью контроля микоплазмоза. Уже пятьдесят лет применяют в ветеринарной практике тилозин. Самыми новыми, на данный момент, антимикоплазменными ХТП являются фторхинолоны, а им уже более 20-и лет. Они модифицируются, но им придаются полезные свойства в основном по спектру противомикробного действия.

Учитывая давность использования этих препаратов в ветеринарной практике и часто бессистемное, с нарушением доз и схем их применение, оно не только не эффективно, но и наносит существенный ущерб за счет развития резистентности у вида M. gallisepticum. Определение чувствительности микоплазм к ХТП является основой для их практического применения. Для рационального подбора средств эффективной антимикоплазменной терапии и профилактики возникновения и распространения инфекции необходимо знать чувствительность выделенных культур возбудителей к антимикробным препаратам. Результаты определения чувствительности должны иметь количественное выражение. Значимость этой работы заключается в том, что эффективность ХТП будет зависеть не только от правильно определенной in vitro чувствительности, но и от ряда других, иногда трудно прогнозируемых факторов: фенотипической и генотипической изменчивости возбудителя и особенностей фармакокинетики и фармадинамики препаратов.

Целью проведенных исследований явилось выделение полевых культур РМ и определение эффективности к наиболее часто применяемым ХТП по отношению к ним в сравнении с референтными штаммами микоплазм.

М АТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Для выделения и клонирования микоплазм использовали питательные среды и методики, принятые в микоплазмотологии. Идентификацию микоплазм проводили методом РА с применением специфических сывороток и референтных штаммов микоплазм по стандартным методикам. Испытание проводили на 4-х клонированных изолятах М.gallisepticum, выделенных от птиц нескольких птицефабрик, одного от зарянки Eritracus rubecula и двух референтных штаммов – S6 и PG -31.

Оценку эффективности ХТП определяли с использованием терапевтического индекса «Т» по формуле Т=МИК/К.
Где: МИК – минимальная ингибирующая концентрация (мкг/мл)
К – концентрация данного антибиотика (мкг/мл) в крови.
Эффективность химиопрофилактики оценивается положительно, если Т< 0,3.

Результаты концентрации некоторых антибиотиков в крови кур представлены в таблице №1
Концентрация антибиотиков в крови кур (К, мкг/мл) после введения среднетерапевтических доз препарата

Таблица 1

Для наиболее значимых для профилактики РМ препаратов тилозина и тиамутина этот показатель установлен при выпаивании с водой в концентрации 0,05% и 0,025% соответственно.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИСЛЕДОВАНИЯ
Результаты исследований МИК антимикоплазменных препаратов in vitro к референтным и полевым штаммам М.gallisepticum представлены в таблице 2.

Таблица 2
Минимальные ингибирующие концентрации антимикоплазменных препаратов in vitro

Расчет эффективности применения антибиотиков на примере окситетрациклина гидрохлорида.
МИК тетрациклина= 15.625.
Известно, что величина К тетрациклина при использовании среднеарифметических доз – 4 мкг/мл (3-5) таблица 1, максимальных доз – 10 мкг/мл.

Следовательно, в нашем случае терапевтический индекс будет равен:
Т=15.625:4=3.9 (>0,3), т.е. возбудитель микоплазмоза устойчив к антибиотику и лечение тетрациклином не даст антимикробного эффекта, даже при использовании максимальных доз (Т=15.625:10=1,5625).

Руководствуясь приведенным примером и данными таблиц с МИК антибиотиков, легко можно рассчитать их эффективность.

Из представленных в таблице 2 результатов исследований видно, что из 23 исследованных антимикоплазменных препаратов или их комбинаций только китасамицин и тиамулин были эффективны в отношении к полевым штаммам M.gallisepticum(Т<0,3). При этом их МИК к референтным штаммам была в среднем в 2-4 ниже, чем к полевым, что указывает на развитие резистентности. Ни один из препаратов, содержащий тилозин,не был эффективен в отношении полевых штаммов микоплазм.

Дополнительно проведено сравнительное испытание 4 антибиотиков макролидной группы в отношении референтных и полевых штаммов M.gallisepticum. Результаты представлены в табл. 3.

Таблица 3;
Сравнительное испытание 4 антибиотиков макролидной группы в отношении референтных и полевых штаммов M.gallisepticum

Полученные данные наглядно свидетельствуют о том, что даже одинаковые препараты от одного производителя могут существенно отличаться по своей антимикробной активности как к полевым, так и референтным штаммам микоплазм.

ВЫВОДЫ
Для рационального подбора средств эффективной антимикоплазменной терапии и профилактики распространения инфекции необходимо проводить выделение циркулирующего в хозяйстве возбудителя респираторного микоплазмоза с последующим определением его чувствительности к антимикробным препаратам с установлением минимальной ингибирующей концентрации.

Подготовлено по материалам «VIого Международного Ветеринарного Конгресса по Птицеводству» для webmvc.com